BNMRZ NMR Halle

Sattler Lab

We are using nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy in  integrative structural biology, combined with X-ray crystallography, SAXS, SANS, cryo-EM and biophysical techniques to study the structure, interactions and dynamics of biomolecules in solution and for structure-based drug discovery.

Follow us on BlueSky

Visit our TUM website

Wir verwenden Kernspinresonanzspektroskopie (NMR) in der integrativen Strukturbiologie, kombiniert mit Röntgenkristallographie, SAXS, SANS, Kryo-EM und biophysikalischen Techniken, um die Struktur, Wechselwirkungen und Dynamik von Biomolekülen in Lösung zu untersuchen und für die strukturbasierte Arzneimittelforschung.

Follow us on BlueSky

Visit our TUM website

Über uns

Molekulare Erkennung in der Regulation der Genexpression und Signalgebung

Ein Schwerpunkt der Arbeitsgruppe Sattler liegt auf dem Verständnis der strukturellen Grundlagen von Protein-RNA-Interaktionen, die für verschiedene Aspekte der Genexpression funktionell wichtig sind, beispielsweise für die Regulation des (alternativen) prä-mRNA-Spleißens und der Gen-Silencing durch nicht-kodierende RNAs (siRNAs, miRNAs). Mehr als 90 % der menschlichen Multi-Exon-Gene werden alternativ gespleißt, und eine Fehlregulation des Spleißens wird mit verschiedenen menschlichen Erkrankungen in Verbindung gebracht. Das Spleißosom ist eine hochdynamische Maschinerie, die zahlreiche Protein-RNA-Interaktionen beinhaltet. Während der verschiedenen Schritte, die schließlich zum Spleißen der prä-mRNA führen, werden diese Komplexe kontinuierlich neu angeordnet, und ihre Zusammensetzung kann, beispielsweise im Kontext des alternativen Spleißens, moduliert werden. Dies erfordert zwar dynamische molekulare Interaktionen, doch spezifische und dichte Komplexe entstehen durch die kooperative Kombination mehrerer schwacher Protein-Protein- und Protein-RNA-Interaktionen. Aktuelle Projekte konzentrieren sich auf Protein-Protein- und Protein-RNA-Interaktionen, die eine wichtige Rolle bei der Regulation des konstitutiven und alternativen Spleißens sowie anderer Aspekte des RNA-Stoffwechsels mit nicht-kodierenden RNAs spielen.

NMR eignet sich hervorragend zur Untersuchung solcher dynamischen und transienten Interaktionen in Lösung. Wir implementieren und entwickeln integrierte strukturbiologische Ansätze, die NMR-Spektroskopie und Kleinwinkelneutronen- und/oder Röntgenstreudaten (SAXS/SANS) mit kristallographischen und anderen Informationen kombinieren, um molekulare Mechanismen hochmolekularer Proteinkomplexe in Lösung zu untersuchen.

Ein weiterer Forschungsbereich sind Strukturuntersuchungen von Proteinen und Proteinkomplexen, die an verschiedenen Aspekten der zellulären Signalgebung und der peroxisomalen Biogenese beteiligt sind. Hier wollen wir die strukturellen Grundlagen kritischer Protein-Protein-Interaktionen verstehen, mit einem Schwerpunkt auf Proteinen, die mit menschlichen Krankheiten in Verbindung stehen.

Wir initiieren außerdem Studien zum strukturbasierten Design niedermolekularer Inhibitoren als i) Ausgangspunkte für pharmazeutische Interferenzen und ii) als Werkzeuge zur Modulation und Überwachung der zellulären Signalgebung. Ziel dieser Studien ist die Identifizierung optimierter kleiner chemischer Verbindungen mithilfe strukturbasierter Ansätze. Die NMR ist ein effizientes Werkzeug für einen solchen strukturbasierten chemisch-biologischen Ansatz, da sie nicht nur die Bestimmung dreidimensionaler Strukturen in Lösung ermöglicht, sondern auch die Ligandenbindung von Biomolekülen effizient erkennt und kartiert.

Gruppenmitglieder

Michael Sattler_freigestellt
Prof. Dr. Michael Sattler

Head of the Molecular Targets and Therapeutics Centers, Director Structural Biology, Molecular Targets and Therapeutics Center, Institute of Structural Biology

Profil anzeigen
Karen Biniossek
Karen Biniossek

Assistant to Prof. Dr. Michael Sattler

AnaMessias_STB_2021
Dr. Ana Messias

Staff scientist, team leader

Profil anzeigen
Dr. Sam Asami

Staff Scientist

Stefan Bohn
Dr. Stefan Bohn

Staff Scientist

Matthias Brandl
Dr. Matthias Brandl

Staff Scientist

PD Dr. Gerd Gemmecker

Staff Scientist

Hyunseo Kang
Dr. Hyunseo Kang

Staff Scientist

Winfried Meining
Dr. Winfried Meining

IT manager

Jessica Walther
Jessica Walther

Technical assistant

Gülden Yilmaz
Gülden Yilmaz

Lab manager

Peijian Zou
Dr. Peijian Zou

Staff Scientist

Ting Deng Portrait
Dr. Ting Deng

PostDoc

Jan Borggräfe
Dr. Jan Borggräfe

Postdoc

Tony Fröhlich
Dr. Tony Fröhlich

Postdoc

Aneta Lenard Portrait
Dr. Aneta Lenhard

Postdoc

Agathe Marcelot Portrait
Dr. Agathe Marcelot

Postdoc

Santiago Martinez Lumbreras
Dr. Santiago Martinez-Lumbreras

Postdoc

Ekaterina Tikhaia
Dr. Ekaterina Tikhaia

Postdoc

Annika Elimelech
Annika Elimelech

PhD student

Laure Gauthe Portrait
Laure Gauthé

PhD student

Philipp Mayer
Philipp Mayer

PhD student

Niki Messini
Niki Messini

PhD student

Sebastian Metzler
Sebastian Metzler

PhD student

Clara Morguet
Clara Morguet

PhD student

Mareike Weller
Mareike de Pascali

PhD student

Luca Sperotto
Luca Sperotto

PhD student

Portrait Yuejia Zhu, STB, AG Sattler
Yuejia Zhu

PhD student

Publikationen

Structure, DOI: 10.1016/j.str.2025.10.010 (2025)

Wagner Egea, P. ; Delhommel, F. ; Mustafa, G. ; Leiss-Maier, F. ; Klimper, L. ; Badmann, T. ; Heider, A. ; Wille, I. ; Groll, M. ; Sattler, M. ; Zeymer, C.

Modular protein scaffold architecture and AI-guided sequence optimization facilitate de novo metalloenzyme engineering.

Bostock, M.J. ; Kolloff, C. ; Jerschke, E. ; Asami, S. ; Skerra, A. ; Olsson, S. ; Sattler, M.

Conformational quenching in an engineered lipocalin protein achieves high affinity binding to the toxin colchicine.
Nucleic Acids Res. 53:gkaf741 (2025)

Pérez-Ràfols, A. ; Pérez-Ropero, G. ; Cerofolini, L. ; Sperotto, L. ; Roca-Martínez, J. ; Higuera-Rodriguez, R.A. ; Russomanno, P. ; Kaiser, W.J. ; Vranken, W.F. ; Danielson, U.H. ; Provenzani, A. ; Martelli, T. ; Sattler, M. ; Buijs, J. ; Fragai, M.

Deciphering the RNA recognition by Musashi-1 to design protein and RNA variants for in vitro and in vivo applications.

Hagl, B. ; Spielberger, B.D. ; Neumann, B. ; Pelham, S.J. ; Pandey, D. ; Schlundt, A. ; Barro, C. ; Lechner, A. ; Wolf, C. ; Deenick, E.K. ; Sattler, M. ; Tangye, S.G. ; Rothenfusser, S. ; Renner, E.D.

Signal transducer and activator of transcription 3 (STAT3) variant p.K709N causes hyper-IgE syndrome likely by impaired STAT3-dimer formation.

Nowacki, M. ; Cardoso Micu Menezes, F.M. ; Pykacz, E. ; Popiołek, M. ; Napolitano, V. ; Krishna, C.K. ; Kalel, V.C. ; Erdmann, R. ; Fröhlich, T. ; Plettenburg, O. ; Sattler, M. ; Popowicz, G.M. ; Dawidowski, M.

Quantum mechanics-driven structure-activity relationship study of PEX5-PEX14 protein-protein interaction inhibitors based on a dibenzo[b,e]azepin-6(6H)-one scaffold.

Jobs

Forschungspraktika, Mitarbeit am Arbeitsplatz

Praktika und Laborrotationen werden in den Bereichen Protein-/RNA-Biochemie, (grundlegende) NMR-Experimente und Analyse von Protein- oder RNA-Spektren angeboten.
Für weitere Informationen senden Sie bitte eine Bewerbung (mit kurzem Lebenslauf) an Hanso Kang (hyunseo.kang (a) tum.de).

Bachelor- oder Masterarbeiten

Bachelor- und Masterarbeiten werden in den Bereichen biologische NMR, integrative Strukturbiologie (NMR, Kristallographie, SAXS/SANS, Kryo-EM) und biochemische Untersuchungen von Proteinkomplexen, RNA und Protein-RNA sowie Protein-Kleinmolekül-Interaktionen angeboten. Bitte wenden Sie sich direkt an Michael Sattler (michael.sattler@tum.de).

Dissertationen und Postdoc-Stellen

Wir sind ständig auf der Suche nach exzellenten, hochmotivierten Doktoranden und Postdocs.
Promotions- und Postdoc-Projekte sind in verschiedenen Bereichen unserer Forschung verfügbar:

Biochemie und Strukturbiologie von Proteinen, RNA-gebundene RNA-Biologie (Spleißen, nicht-kodierende RNAs)
Biochemie und Strukturbiologie von Hsp90/Komplexen, Peroxisomenbiogenese und zelluläre Signalgebung
NMR-Methoden, integrierte Strukturbiologie (z. B. Kombination von NMR, Kristallographie, Kryo-EM, SAXS/SANS)
Strukturbasierte Wirkstoffforschung
Bei Fragen wenden Sie sich bitte direkt an Michael Sattler (michael.sattler@tum.de).

Aktuelle Stellenangebote

Dissertation: „Biochemie, Strukturanalyse und Wirkstoffforschung von lncRNAs bei Krebserkrankungen“
Dissertation: „Temperaturabhängige Phasentrennung von RNA-bindenden Proteinen in Chloroplasten“ an der HU Berlin (gemeinsam mit der TUM)
im SPP219 „Molekulare Mechanismen der funktionellen Phasentrennung“ (gemeinsames Projekt TUM/HU Berlin) Projekt
Doktorarbeit „Strukturelle und funktionelle Untersuchung des Proteins C19orf12, das an der neurodegenerativen Erkrankung MPAN beteiligt ist“

Sattler Labor Kontakt

Karen Biniossek
Karen Biniossek

Assistant to Prof. Dr. Michael Sattler

TUM Garching, BNMRZ